一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?/strong>
學(xué)習(xí)和掌握外源基因?qū)胝婧思?xì)胞的主要方法——脂質(zhì)體介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染。了解外源基因進(jìn)入的一般性方法,觀測外源蛋白的表達(dá)(綠色熒光蛋白),為染色準(zhǔn)備實(shí)驗(yàn)材料。
二、實(shí)驗(yàn)原理
上圖所示是脂質(zhì)體介導(dǎo)轉(zhuǎn)染的示意圖,它顯示了外源質(zhì)粒進(jìn)入細(xì)胞的一般過程。
外源基因進(jìn)入細(xì)胞主要有四種方法:電擊法、磷酸鈣法和脂質(zhì)體介導(dǎo)法和病毒介導(dǎo)法。電擊法是在細(xì)胞上短時間暫時性的穿孔讓外源質(zhì)粒進(jìn)入;磷酸鈣法和脂質(zhì)體法是利用不同的載體物質(zhì)攜帶質(zhì)粒通過直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因進(jìn)入細(xì)胞;病毒法是利用包裝了外源基因的病毒感染細(xì)胞的方法使得其進(jìn)入細(xì)胞。但是由于電擊法和磷酸鈣法的實(shí)驗(yàn)條件控制較嚴(yán)、難度較大;病毒法的前期準(zhǔn)備較復(fù)雜、而且可能對于細(xì)胞有較大影響;所以現(xiàn)在對于很多普通細(xì)胞系,一般的瞬時轉(zhuǎn)染方法多采用脂質(zhì)體法。
利用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法重要的就是防止其毒性,因此脂質(zhì)體與質(zhì)粒的比例,細(xì)胞密度以及轉(zhuǎn)染的時間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要問題,通過實(shí)驗(yàn)摸索的合適轉(zhuǎn)染條件對于效率的提高有巨大的作用。
上圖是本次實(shí)驗(yàn)采用的脂質(zhì)體中陽離子組分的結(jié)構(gòu)的示意圖。
本次實(shí)驗(yàn)采用的脂質(zhì)體是promega公司的TransFast脂質(zhì)體試劑,它是一種陽離子脂質(zhì)體和中性脂質(zhì)體的混合物,是對于本次實(shí)驗(yàn)中采用的293T細(xì)胞優(yōu)化的轉(zhuǎn)染試劑。
三、實(shí)驗(yàn)材料與器材
1、材料
293T細(xì)胞
MyoD表達(dá)質(zhì)粒和EGFP表達(dá)質(zhì)粒
DMEM培養(yǎng)基
鏈霉素/青霉素(雙抗)
FCS(小牛血清)
PBS(磷酸鹽緩沖溶液)
胰酶/EDTA消化液
轉(zhuǎn)染試劑(TransFast)
2、器材
20ul/200ul/1ml微量移液器和Tip頭
酒精燈
廢液缸
血球計(jì)數(shù)板
渦旋振蕩器
恒溫水浴箱
臺式離心機(jī)
35mm培養(yǎng)皿
轉(zhuǎn)染管
15ml離心管
觀察用倒置顯微鏡
熒光顯微鏡和CCD
四、 實(shí)驗(yàn)步驟
1、細(xì)胞傳代
(1) 試驗(yàn)準(zhǔn)備:200ul/1mlTip頭各一盒(以上物品均需高壓滅菌),酒精棉球,廢液缸,試管架,微量移液器,記號筆,培養(yǎng)皿,離心管。
(2) 棄掉培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基,用1ml的PBS溶液洗滌兩次。
(3) 用Tip頭加入1ml Trypsin液,消化1分鐘(37℃,5%CO2 )。用手輕拍培養(yǎng)瓶壁,觀察到細(xì)胞*從壁上脫落下來為止。
(4) 加入1ml的含血清培養(yǎng)基終止反應(yīng)。
(5) 用Tip頭多次吹吸,使細(xì)胞*分散開。
(6) 將培養(yǎng)液裝入離心管中,1000rpm離心5min。
(7) 用培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,細(xì)胞計(jì)數(shù)后選擇0.8X106個細(xì)胞加入一個35mm培養(yǎng)皿。
(8) 將合適體積*培養(yǎng)液加入離心管中,混勻細(xì)胞后輕輕加入培養(yǎng)皿中,使其均勻分布。
(9) 將培養(yǎng)皿轉(zhuǎn)入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),第二天轉(zhuǎn)染。
2、細(xì)胞轉(zhuǎn)染
(1)轉(zhuǎn)染試劑的準(zhǔn)備
A. 將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10秒鐘,溶解脂狀物。
B.震蕩后將試劑放在-20℃保存,使用前還需震蕩,。
(2) 選擇合適的混合比例(1:1-1:2/脂質(zhì)體體積:DNA質(zhì)量)來轉(zhuǎn)染細(xì)胞。在一個轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA,震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑,再次震蕩。
(3) 將混合液在室溫放置10-15分鐘。
(4) 吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。
(5) 加入混合液,將細(xì)胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。
(6) 到時后,根據(jù)細(xì)胞種類決定是否移除混合液,之后加入*培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24-48小時。
3、第二次細(xì)胞傳代
(1) 在轉(zhuǎn)染后24小時,觀察實(shí)驗(yàn)結(jié)果并記錄綠色熒光蛋白表達(dá)情況。
(2) 再次進(jìn)行細(xì)胞傳代,按照免疫染色合適的密度0.8X105個細(xì)胞/35mm培養(yǎng)皿將細(xì)胞重新粉入培養(yǎng)皿中。
(3) 在正常條件下培養(yǎng)24小時后按照染色要求條件固定。